اثرات حشره کش پیریمیکارب روی شاخص های فیزیولوژیک گیاه کلزا

نوع مقاله : مقاله کامل، انگلیسی

نویسندگان

1 گروه گیاه پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید چمران اهواز، ایران

2 موسسه تحقیقات گیاه پزشکی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی تهران، ایران

3 گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید چمران اهواز، ایران.

10.22034/jesi.46.2.4

چکیده

این مطالعه به بررسی اثرات فیزیولوژیک حشره‌کش پیری‌میکارب بر گیاه کلزا در مراحل اولیه رشد می‌پردازد. گیاهان رشد‌یافته در مزرعه، در مرحله 2-4 برگی، محلول‌پاشی برگی پیری‌میکارب (500 میلی‌گرم بر لیتر) یا آب مقطر (شاهد) دریافت کردند و سپس تحت شرایط کنترل‌شده گلخانه نگهداری شدند. اندازه‌گیری‌های فیزیولوژیک که 72 ساعت پس از تیمار انجام شد، افزایش معناداری را در ترکیبات فنولی کل (۴٪/۳۷، ۰۰۸/۰ P=) و کلروفیلb (۴٪/۳۰، ۰۰۶/۰P=) در گیاهان تیمارشده نشان داد. تغییرات معناداری در سطوح پراکسید هیدروژن (H₂O₂) (۱٪/۲۱+، ۳۵۸/۰ P=). مالون‌دی‌آلدئید (۰٪/۱۴-، ۰۸۶/۰ P=)، کلروفیل a (۱٪/۵-، ۵۹۱/۰ P=)، کلروفیل کل (۸٪/۰+، ۹۲۴/۰ P=)، یا کاروتنوئیدها (٪۳/۹-، ۵۷۴/۰ P=)، مشاهده نشد. تحلیل همبستگی (۸ n=تکرار) یک رابطه مثبت قوی میان ترکیبات فنولی و کلروفیل b (۹۰۲/ r=،۰۰۲/۰ P=) را نشان داد که بیانگر تنظیم متابولیکی هماهنگ است. همبستگی‌های قوی میان رنگیزه‌های فتوسنتزی اصلی، نشان‌دهنده حفظ یکپارچگی عملکردی دستگاه فتوسنتزی بود. این یافته‌ها نشان می‌دهد که گیاهان کلزا در مراحل اولیه رشد به قرارگیری در معرض پیری‌میکارب از طریق تنظیمات متابولیکی خاص شامل بیوسنتز ترکیبات فنولی و تجمع کلروفیل بدون شواهدی از آسیب اکسیداتیو یا اختلال فتوسنتزی b پاسخ می‌دهند. نتایج از ادامه استفاده از پیری‌میکارب در مدیریت تلفیقی آفات در محصول کلزا حمایت می‌کند.

چکیده تصویری

اثرات حشره کش پیریمیکارب روی شاخص های فیزیولوژیک گیاه کلزا

کلیدواژه‌ها

موضوعات


© 2026 by Author(s), Published by the Entomological Society of Iran

This Work is Licensed under Creative Commons Attribution-Non-Commercial 4.0 International Public License.

Agricultural Jihad Ministry of Iran. (2022) Agricultural Statistics: Field Crops. Ministry of Agricultural Jihad, Islamic Republic of Iran.
Ahmad, P., Ashraf, M., Younis, M., Hu, X., Kumar, A., Akram, N. A., & Al-Qurainy, F. (2012) Role of transgenic plants in agriculture and biopharming. Biotechnology Advances, 30(3), 524-540. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2011.09.006
Ainsworth, E. A., & Gillespie, K. M. (2007) Estimation of total phenolic content and other oxidation substrates in plant tissues using Folin–Ciocalteu reagent. Nature Protocols, 2(4), 875-877. https://doi.org/10.1038/nprot.2007.102
Akhatar, J., Upadhyay, P., & Kumar, H. (2025) Crop cultivation and hybrid seed production strategies in rapeseed-mustard. in Hybrid seed production for boosting crop yields: applications, challenges and opportunities (pp. 177-224). Singapore: Springer Nature Singapore. https://doi.org/10.1007/978-981-96-0506-4_8
Arnon, D. I. (1949). Spectrophotometric determination of Chlorophyl in biological material. Plant Physiology, 24, 1-15. https://doi.org/10.1104/pp.24.1.1
Bhatia, V., Uniyal, P. L., & Bhattacharya, R. (2011) Aphid resistance in Brassica crops: challenges, biotechnological progress and emerging possibilities. Biotechnology Advances, 29(6), 879-888. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2011.07.005
Cerny, M., Habanova, H., Berka, M., Luklova, M., & Brzobohatý, B. (2018) Hydrogen peroxide: its role in plant biology and crosstalk with signalling networks. International Journal of Molecular Sciences, 19(9), 2812. https://doi.org/10.3390/ijms19092812
Chahid, K., Laglaoui, A., Zantar, S., & Ennabili, A. (2015) Antioxidant-enzyme reaction to the oxidative stress due to alpha-cypermethrin, chlorpyriphos, and pirimicarb in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.). Environmental Science and Pollution research, 22(22), 18115-18126. https://doi.org/10.1007/s11356-015-5024-3
Du, C., Ni, X., Yan, M., Meng, Q., & He, J. (2025) Physiological and transcriptome analysis reveals the mechanism of Gymnocarpos przewalskii response to drought stress. BMC Plant Biology, 25(1), 1-19. https://doi.org/10.1186/s12870-025-06185-7
Fürstenberg-Hägg, J., Zagrobelny, M., & Bak, S. (2013) Plant defense against insect herbivores. International Journal of Molecular Sciences, 14(5), 10242-10297. https://doi.org/10.3390/ijms140510242
Gruss, I. A., Bączek, P., Ćwieląg-Piasecka, I., Jędrzejewski, S., Magiera-Dulewicz, J., & Twardowska, K. (2025) Assessing the ecotoxicological effects of pesticides on non-target plant species. Environmental Monitoring and Assessment, 197(9). https://doi.org/10.1007/s10661-025-14532-2
Gulcin, İ. (2025) Antioxidants: A comprehensive review. Archives of Toxicology, 99, 1893–1997. https://doi.org/10.1007/s00204-025-03997-2
Haj-Mohammadnia Ghalibaf, K., Mathiassen, S., Kudsk, P., & Hosseini, S. A. (2013). Effect of adjuvants on the efficiency of nicosulfuron in the presence of ions in spray solution. In Proceedings of the fifth Iranian Weed Science Congress, Karaj, Iran. (In Persian)
Homayoonzadeh, M., Moeini, P., Talebi, K., Roessner, U., & Hosseininaveh, V. (2020) Antioxidant system status of cucumber plants under pesticides treatment. Acta Physiologiae Plantarum, 42(11), 161. https://doi.org/10.1007/s11738-020-03150-9
Hong, B., Zhou, B., Zhao, D., Liao, L., Chang, T., Wu, X., & Guan, M. (2024) Yield, cell structure and physiological and biochemical characteristics of rapeseed under waterlogging stress. BMC Plant Biology, 24(1), 941. https://doi.org/10.1186/s12870-024-05599-z
Hussain, S., Rao, M. J., Anjum, M. A., Ejaz, S., Zakir, I., Ali, M. A., & Niazian, M. (2019) Oxidative stress and antioxidant defense in plants under drought conditions. In M. Hasanuzzaman, M. Fujita, H. Oku, & M. Nahar (Eds.), Plant Abiotic Stress Tolerance, 207–219. https://doi.org/10.1007/978-3-030-06118-0_9
Karimzadeh, R., Tabatabaie, E., Hejazi, M. J., & Behmaram, S. (2025) Using drone for chemical control of cabbage aphid, Brevicoryne brassicae L. (Hemiptera: Aphididae) in canola fields. Journal of Entomological Society of Iran, 45(1), 75-85.  https://doi.org/10.61186/jesi.45.1.6
Khan, M. N., Zhang, J., Luo, T., Liu, J., Ni, F., Rizwan, M., ... & Hu, L. (2019). Morpho-physiological and biochemical responses of tolerant and sensitive rapeseed cultivars to drought stress during early seedling growth stage. Acta Physiologiae Plantarum, 41(2), 25. https://doi.org/10.1007/s11738-019-2812-2
Kulbat, K. (2016) The role of phenolic compounds in plant resistance. Biotechnology and Food Science, 80(2), 97-108. https://doi.org/10.34658/bfs.2016.80.2.97-108
Kumar, S., Abedin, M. M., Singh, A. K., & Das, S. (2020) Role of phenolic compounds in plant-defensive mechanisms. In Plant phenolics in sustainable agriculture: volume 1 (pp. 517-532). Singapore: Springer Singapore. https://doi.org/10.1007/978-981-15-4890-1_22
Lichtenthaler, H. K., & Buschmann, C. (2001) Extraction of phtosynthetic tissues: chlorophylls and carotenoids. Current Protocols in Food Analytical Chemistry, 1(1), F4-2.
Porra, R. J., & Scheer, H. (2019). Towards a more accurate future for chlorophyll a and b determinations: the inaccuracies of Daniel Arnon’s assay. Photosynthesis Research, 140(2), 215-219. https://doi.org/10.1007/s11120-019-00627-z
Sharma, A., Shahzad, B., Rehman, A., Bhardwaj, R., Landi, M., & Zheng, B. (2019) Response of the phenylpropanoid pathway and the role of polyphenols in plants under abiotic stress. Molecules, 24(13), 2452. https://doi.org/10.3390/molecules24132452
Ullah, F., Güncan, A., Abbas, A., Gul, H., Guedes, R. N. C., Zhang, Z., & Lu, Y. (2024) Sublethal effects of neonicotinoids on insect pests. Entomologia Generalis, 44(5), 1145-1160. DOI: 10.1127/entomologia/2024/2730
Velikova, V., Yordanov, I., & Edreva, A. J. P. S. (2000) Oxidative stress and some antioxidant systems in acid rain-treated bean plants: protective role of exogenous polyamines. Plant Science, 151(1), 59-66. https://doi.org/10.1016/S0168-9452(99)00197-1
Xiao, D., Yang, T., Desneux, N., Han, P., & Gao, X. (2015) Assessment of sublethal and transgenerational effects of pirimicarb on the wheat aphids Rhopalosiphum padi and Sitobion avenaePLoS One, 10(6), e0128936. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0128936
Yang, L., Wen, K. S., Ruan, X., Zhao, Y. X., Wei, F., & Wang, Q. (2018) Response of plant secondary metabolites to environmental factors. Molecules, 23(4), 762. https://doi.org/10.3390/molecules23040762
Yüzbaşıoğlu, E., & Dalyan, E. (2019) Salicylic acid alleviates thiram toxicity by modulating antioxidant enzyme capacity and pesticide detoxification systems in the tomato (Solanum lycopersicum Mill.). Plant Physiology and Biochemistry, 135, 322-330. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2018.12.023
Zhang, W., Zhang, Y., Yang, Y., & Chen, E. (2021) Oilseed rape (Brassica napus L.) phenology estimation by averaged Stokes-related parameters. Remote Sensing, 13(14), 2652. https://doi.org/10.3390/rs13142652
Zheng, Q., & Liu, K. (2022) Worldwide rapeseed (Brassica napus L.) research: A bibliometric analysis during 2011–2021. Oil Crop Science, 7(4), 157-165. https://doi.org/10.1016/j.ocsci.2022.11.004
CAPTCHA Image